- osnova
- priprema
- Koristiti
- Vrsta uzoraka
- uzimanje uzorka
- Identifikacija uzorka
- Prijenos
- Ispitivanja provedena na prijevoznom sredstvu Cary Blair
- QA
- Reference
Prosječna Cary Blair je polukruta, agar, koristi se za prijevoz i očuvanje bioloških uzoraka koji nosi crijevnih patogena, mikroorganizme i anaerobni nestabilan. Kao i sva prevozna sredstva, njegova je funkcija zadržati uzorak u optimalnim uvjetima dok se ne uzgaja. Prisutni patogeni mikroorganizmi kao i prateći mikrobioti moraju ostati održivi, ali bez povećanja njihove populacije.
Cary Blair Medium rezultat je promjene formulacije Stuart transportnog medija. Modifikacija je izvršena 1964. godine i sastojala se od zamjene sustava za regulaciju pH (glicerofosfat) fosfatnim anorganskim puferom.

A. Culturette s Cary Blair Medium B. Kolekcionar stolice s Cary Blair Medium. Izvor: A. Video Meganhow, nabavite kulturu rana 2011 youtube.com B. Korisnik: Mattes
Preformulacija je bila potrebna jer su njeni tvorci shvatili da bi glicerofosfat nakon određenog vremena moglo metabolizirati neke saprofitne bakterije. One se mnogostruko preklapaju u prisutnim patogenima.
Ostale promjene bile su eliminacija metilen plave boje, kao i podešavanje pH prema alkalnosti (pH 8,4). Sve ove promjene poboljšale su učinkovitost prijevoznih sredstava.
Izvorno medij Cary Blair korišten je za održavanje crijevnih patogena, poput Shigella flexneri, Salmonella sp, Vibrio cholerae i Campylobacter sp.
Međutim, kasnije je uočena učinkovitost u očuvanju održivosti zahtjevnih i labilnih patogena, poput: Neisseria gonorrhoeae, Haemophilus influenzae, Neisseria meningitidis, Bordetella pertussis, Streptococcus pneumoniae i nekih anaeroba.
osnova
Cary Blair Medium sadrži natrijev klorid, natrijev tioglikolat, dinatrijev fosfat, kalcijev klorid i agar.
Natrijev klorid održava osmotsku ravnotežu medija, dinatrijev fosfat i kalcijev klorid uravnotežuju pH. Natrijev tioglikolat sa svoje strane održava mali oksidacijski redukcijski potencijal, dok mali dio agara daje polučvrste konzistencije.
Medij Cary Blair ne sadrži hranjive tvari jer je funkcija transportnog medija zadržavanje uzorka bez promjene u smislu vlage i mikrobnog opterećenja; to jest, izbjegava se sušenje uzorka uz očuvanje održivosti i količine prisutnih mikroorganizama.
Konačno, blago alkalan pH sprečava smrt mikroorganizama po kiselosti, posebno vibriosi su vrlo osjetljivi na kiseline.
priprema
Medij Cary Blair komercijalno je dostupan kao poseban uređaj za upotrebu. Transportni sustav pokriven je plastičnom vrećicom Peel Pack. Unutra se nalazi tampon za prikupljanje uzorka i posuda za spremnik za polutvrdi medij Caryja Blaira.
Također na tržištu postoje komercijalne kuće koje u laboratoriju isporučuju dehidrirani medij za njegovu pripremu.
Da biste to učinili, izvažite 13,2 g dehidriranog medija i otopite ga u jednoj litri destilirane vode. Zagrijte i protresite pripravak dok se potpuno ne otopi. Raspodijelite medij u epruvetama s navojnim zatvaračima (bakelit).
Kuhajte epruvete 15 minuta. Ostavite da se ohladi i držite na sobnoj temperaturi do upotrebe.
Ninokulirani Cary Blair Medium može se optimalno skladištiti do 18 mjeseci na sobnoj temperaturi.
PH sredstva mora se prilagoditi na 8,4 ± 0,2. Boja pripremljenog medija je bež, s određenom opalescencijom.
Koristiti
Vrsta uzoraka
Cary Blair Medium koristi se kada uzorci stolice, rektalnog brisa i vaginalni bris ne mogu biti odmah obrađeni.
Ako nije dostupno prijevozno sredstvo, uzorci se mogu čuvati na -70 ° C.
uzimanje uzorka
Tampon se impregnira s uzorkom i unosi se u medij Cary Blair, a da ne dosegne dno.
Identifikacija uzorka
Medij Cary Blair mora imati naljepnicu na kojoj su postavljeni osnovni podaci, kao što su: ime i prezime pacijenta, identifikacijski broj uzorka, izvor uzimanja uzorka, liječnik, datum i vrijeme prikupljanja. uzorak, pretpostavljena dijagnoza, liječenje antibioticima.
Prijenos
Dobro pokriveno i transportirano na sobnoj temperaturi za fekalne uzorke. Dok se za vaginalne uzorke u potrazi za anaerobnim mikroorganizmima preporučuje prijevoz uzoraka na 4 ° C.
U svim slučajevima, preporučeno vrijeme prijenosa je 4-6 sati, s najviše 24 sata.
Ako se sumnja na prisustvo Campylobacter jejuni u uzorcima stolice i oni se ne mogu obraditi u roku od 24 sata, preporučuje se skladištenje u mediju Cary Blair na 4 ° C.
Ispitivanja provedena na prijevoznom sredstvu Cary Blair
Nekoliko studija pokazalo je da medij Cary Blair može ostati održiv za enteropatogene mikroorganizme roda Shigella i Salmonella čak 49 dana nakon uzimanja uzorka.
Vibrio kolera, drugi važan crijevni patogen, može preživjeti 22 dana, dok se Yersinia pestis (uzročnik bubonske i pneumonične kuge) može oporaviti nakon 75 dana.
Međutim, unatoč dokazanoj trajnosti u pogledu oporavka tih mikroorganizama, preporučuje se što je moguće brže prenošenje uzetih uzoraka u mediju Cary Blair u laboratoriju.
Isto tako, jednom kada uzorak stigne u laboratorij, mora se bez odgađanja posijati u odgovarajućem mediju kulture.
S druge strane, medij Cary Blair, osim što je koristan za transport fakultativnih mikroorganizama, preporučuje se i za uzorke koji sadrže anaerobne patogene.
U tom smislu, DeMarco i suradnici su 2017. proveli studiju pod nazivom: Opstanak vaginalnih mikroorganizama u tri komercijalno dostupna transportna sustava.
Dokazali su da je Cary Blair Transport Medium najbolji transportni medij za očuvanje i oporavak vaginalnih anaerobnih mikroorganizama. Isto tako, pokazali su da je najveća brzina oporavka postignuta kada je temperatura prijenosa bila 4 ° C.
Stoga se zaključuje da temperatura transporta vaginalnih brisa (anaerobnih mikroorganizama) treba biti 4 ° C. Dok je za uzorke fekalija u potrazi za fakultativnim mikroorganizmima idealna temperatura sobne temperature.
QA
Da bi se procijenila kontrola kvalitete transportnog medija Cary Blair, poznati sojevi poput Shigella sonnei ATCC 11060, Salmonella choleraesuis ATCC 14028, Vibrio cholerae i Campylobacter sp.
Medij se inokulira odabranim sojem i drži se na sobnoj temperaturi 24 sata. Zatim se sije u odgovarajuće kulturne medije. U svim se slučajevima očekuje zadovoljavajući oporavak dotičnog mikroorganizma.
Reference
- DeMarco AL, Rabe LK, Austin MN i sur. Preživljavanje vaginalnih mikroorganizama u tri komercijalno dostupna transportna sustava. Anaerobnost. 2017; 45: 44–49.
- Wasfy M, Oyofo B, Elgindy A, Churilla A. Usporedba medija za čuvanje za pohranu uzoraka stolice. J Clin Microbiol. devetnaest devedeset pet; 33 (8): 2176-2178.
- Dan M, Richardson J, dr Miliotis, Koornhof HJ. Usporedba medija za zaštitu i uvjeti zamrzavanja za skladištenje uzoraka fekalija. J Med Microbiol. 1989; 28 (2): 151-4.
- Koneman E, Allen S, Janda W, Schreckenberger P, Winn W. (2004). Mikrobiološka dijagnoza. 5. izd. Uredništvo Panamericana SA Argentina.
- Forbes B, Sahm D, Weissfeld A. (2009). Bailey & Scott mikrobiološka dijagnoza. 12 ed. Uredništvo Panamericana SA Argentina.
- Conda Pronadisa Laboratories. Pola Cary Blair. Dostupno na: condalab.com
- Metrix Laboratory. Cary Blair. Dostupno na: metrixlab.mx
